种群遗传结构分析2. 清远市兴渔水产科技有限公司,广东 清远 511510
Cranoglanis 3个种群的野生资源状况,并对3个种群的物种有效性进行分析。【方法】 采用线粒体控制区Dloop基因序列测定技术, 分析了珠江水系、海南水系和越南红河水系长臀
种群的群体遗传结构及其变异。【结果】 在检测的84个个体中共得到43个单倍型,呈现出较高的单倍型多样性与较为贫乏的核苷酸多样性,其中海南长臀
C. multiradiatus群体的单倍型多样性(Hd=0.871)和核苷酸多样性(Pi=0.006 4)最低;Tajima’s D中性检验以及核苷酸不配对分析均表明,3个长臀
群体趋于稳定,未经历过大规模的种群扩张。Fst分析发现,海南长臀
同珠江长臀
C. bouderius、红河长臀
C. henrici产生了一定的遗传分化,而珠江和红河群体未发现明显遗传分化,从遗传距离来看,珠江和红河长臀
净遗传距离为0.000。【结论】 长臀
野生资源较为贫乏,且海南群体最为严重;认为应将珠江长臀
和红河长臀
归为同一亚种长臀
C. bouderius,而海南长臀
作为长臀
的另一个亚种。
线粒体控制区 Dloop基因序列 物种有效性 遗传结构 资源状况 2. Qingyuan Xingyu Fishery Science Co., Ltd., Qingyuan 511510, China
鱼类线粒体基因是遗传信息重要的载体,具有母系遗传、进化速度快等特点,是研究种群遗传结构的理想材料[1-2];线粒体控制区又称D-环区(Dloop),其进化速度最快,是mtDNA其他区段的5~10倍[3],遗传变异大,是种群遗传多样性研究的常用标记之一,很适合做种内、种群或个体间的遗传分化研究[4]。
长臀





自1927年Koller[11]在海南发现一新种Pseudeutropichthys multiradiatus Koller以来,长臀






珠江长臀


组织样品DNA提取试剂盒为TIANGEN生化科技有限公司产品、Tap DNA聚合酶为TaKaRa有限公司产品,其他试剂均为分析纯。引物由上海捷瑞生物公司合成,测序由上海英骏公司完成。引物根据NCBI上已有长臀

取30 mg左右鳍条样品,于蒸馏水中漂洗数次,用滤纸吸干表面水分,放入1.5 mL离心管中,用剪刀剪碎,加裂解液,在55 ℃水域中直至裂解完全,按TIANGEN组织DNA提取试剂盒说明书进行操作,然后琼脂糖凝胶电泳检验提取效果,于-20 ℃条件保存供后续试验。
1.2.2 长臀
PCR反应体系总体积为50 μL,其中包括10×Buffer 5 μL,dNTPs (2.5 mmol·L-1) 4 μL,上、下游引物各1 μL,Ex Taq酶(1 U·μL-1) 2 μL,模板1 μL,用双蒸水补足50 μL。Dloop PCR反应条件:94 ℃预变性5 min;94 ℃变性30 s,54 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,35个循环;72 ℃延伸10 min。反应结束后,取2 μL PCR产物做琼脂糖凝胶电泳,检验目的基因质量,然后送上海英骏生物公司测序鉴定。
1.2.3 序列分析测序结果同NCBI上序列比对分析后,用Clustal X软件进行排序,并进行手工校正[17]。MEGA 5.0软件统计序列的碱基组成、变异位点数、简约信息位点以及群体间的遗传距离[18];用DnaSP 5.0计算单倍型多态性和核苷酸多样性等遗传多样性指数[19]。利用Arlequin3.5中性检验和核苷酸不配对分布2种方法来检测长臀

采用Clustal X软件分别对长臀




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表 1 长臀![]() |

采用DNAsp5.0和Arlequin3.5软件对3个长臀



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表 2 43个单倍型在长臀![]() |
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表 3 长臀![]() |
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图 1 长臀![]() |

采用Mega5.0对长臀


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表 4 长臀![]() |
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图 2 基于Dloop基因序列构建的长臀![]() C. bouderius;H:海南长臀 C. multiradiatus;Y:红河长臀 C. henrici。 |

遗传多样性是物种不断进化适应环境的基础,是评价生物资源状况的重要依据,遗传多样性的降低或丧失, 会对野生群体的资源状况造成极大威胁。采用Dloop基因序列对长臀













长臀










长臀




















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