2. 西昌学院 动物科技学院,四川 西昌 615000;
3. 南充市顺庆区农牧业局,四川 南充 637000
2. College of Animal Science and Technology, Xichang College, Xichang 615000, China;
3. Farming and Animal Husbandry Bureau in Shunqing District of Nanchong City, Nanchong 637000, China
十二指肠贾第虫Giardia duodenalis,又名贾第虫、蓝氏贾第鞭毛虫G. lamblia、肠贾第虫G. intestinalis,是一种人兽共患肠道致病寄生虫,其宿主广泛,可感染哺乳动物(包括人)、鸟类及两栖动物等[1-2]。贾第虫主要通过粪口途径传播,动物可通过食入被污染的食物和水而感染[3],感染后主要表现为消化系统症状:胃胀、呕吐、消化不良及急性或慢性腹泻。此外,其危害程度对不同动物也有所不同,主要取决于宿主的免疫、营养状况及有无同时感染其他寄生虫等[4-5]。
目前,根据基因型和宿主特异性,将贾第虫划分为8个集聚体:集聚体A~H[6-7]。山羊是贾第虫感染的常见宿主之一,其感染的基因型包括集聚体A、B和E,其中集聚体E是优势集聚体[8-10]。集聚体A和B对人也具有感染性,是常见的人兽共患集聚体[10-11]。近年来有研究表明,人也能感染集聚体E[12-14],因此山羊感染贾第虫具有人兽共患传播的风险。
近年来,国内报道多种动物已感染贾第虫,如牛感染集聚体A、B和E,山羊感染集聚体A和E,绵羊感染集聚体A、B和E,狗感染集聚体A、C、和D,猫感染集聚体F,猪感染集聚体A、B、D、E和F,兔子感染集聚体B和E,啮齿类感染集聚体A、B和G,非人灵长类感染集聚体A、B和E,以及有些野生动物也被贾第虫感染[15]。对于山羊的贾第虫感染,已有多个国家进行了相关报道,如西班牙[13]、印度[14]和马来西亚[16]等,不同国家和地区的感染率存在较大差异。然而国内对山羊贾第虫感染的研究甚少,截至2017年12月,仅黑龙江[17]、安徽[18]、陕西和河南[12]等省份有研究,平均感染率为6.07%,只检测到集聚体A和E,以集聚体E为主[15]。国外研究发现,山羊还可感染集聚体B [14, 16]。目前,四川地区鲜见山羊感染贾第虫的相关报道。本研究采用多位点序列分型技术调查四川省部分地区成年山羊贾第虫感染情况,并对阳性样品进行基因型和亚型分析,为研究四川地区成年山羊贾第虫流行情况以及感染的集聚体类型研究提供参考。
1 材料与方法 1.1 粪便采集2017年6—8月,在四川省的12个养殖场(名山、经久、纳溪、邻水、水口、大林、松垭、北川、简阳、富顺、青川和双流)采样,采样养殖场地理分布如图1所示,样本量按山羊总数的20%采集,直肠采粪,共收集成年山羊(年龄均为1~2周岁)粪便342份,逐份标记,置于冰箱4 ℃条件下保存。
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图 1 采样点的地理分布图 Figure 1 Geographic distributions of sampling sites in Sichuan |
粪便DNA提取试剂盒(E.Z.N.A.®Stool DNA Kit)购自美国MOBIO Bio-tek公司。2×Taq PCR Master Mix购自天根生化科技(北京)有限公司。引物由英潍捷基(上海)贸易有限公司合成。
1.3 粪便DNA提取粪便样品于采样后24 h内经改良饱和蔗糖溶液漂浮处理,然后按粪便DNA提取试剂盒说明书操作,提取的DNA于–20 ℃条件下保存待检[19]。
1.4 巢式PCR扩增基于β–贾第素(bg)基因位点对所有DNA进行巢式PCR扩增,引物合成与扩增条件参照文献[19-20]。对bg位点扩增所得的阳性样品再进一步扩增其磷酸丙糖异构酶基因位点tpi和谷氨酸脱氢酶基因位点gdh,鉴定基因亚型[20-21]。采用25 μL的反应体系:2×Taq PCR Master Mix 12.5 μL,DNA模板2 μL,上下游引物各1 μL,加ddH2O至25 μL。第2轮的PCR产物经10 g·L–1的琼脂糖凝胶电泳检测后,将阳性样品产物保存并送检测序。
1.5 测序及分析阳性PCR产物送北京六合华大基因科技有限公司双向测序。所得序列进行NCBI的Blast比对,并采用Clustal X与NCBI中的参考序列进行比对和校正,把序列上传至GenBank,得到相关序列的登录号为MG602956、57、58、59、60、61、62、63。采用Mega 6软件通过邻接法(Neighbor-joining method)构建系统发育树。
1.6 数据分析利用SPSS 17.0进行卡方检验,P<0.05说明处理间具有差异显著性。
2 结果与分析 2.1 成年山羊贾第虫感染情况采集的342份粪样中,51份检测为贾第虫阳性,总感染率为14.91%(51/342)。除了松垭和大林2个养殖场以外,其他10个养殖场均检测出贾第虫感染,感染率在5.00%~37.50%,其中,青川养殖场感染率最高,阳性率为37.50%;4个养殖场感染率较高,均高于20%,分别是富顺、邻水、名山和双流养殖场,感染率分别为35.00%、28.57%、21.95%和20.00%(表1)。统计学分析结果表明,12个养殖场的感染率间无显著差异(χ2=1.333,df=9,P=0.998)。
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表 1 四川12个养殖场成年山羊贾第虫感染情况 Table 1 Infection states of Giardia duodenalis in adult goats from 12 different farms in Sichuan |
3个基因位点(bg、tpi和gdh)扩增后分别得到50、43和33条序列。序列分析显示,本次调查的成年山羊感染的贾第虫类型均为集聚体E。对bg位点扩增出的51份阳性样品序列鉴定的4个亚型构建进化树(图2)。JY13(MG602960)和CD02(MG602962)分别与已知的基因亚型E8(KY633465)和E5(KY769092)聚在一起,而ZG16(MG602961)和XC09(MG602962)形成独立的分支,为2个新的基因亚型;ZG16与E5、E8亲缘关系较近,而XC09与基因亚型E14(KJ917613)聚得更近。tpi位点进化树(图3)显示,BC07(MG602957)和CD01(MG602956)分别与已知的基因亚型E4(KP635102)和E2(KP635100)聚在一起。gdh基因位点构建的进化树(图4)显示,JY13(MG602959)与已知的基因亚型E3(KF843925)聚在一起,为同一基因亚型,而GY17(MG602958)则与基因亚型E4(KF843926)聚为一支。3个基因位点(bg、tpi和gdh)的进化树都支持本试验鉴定的成年山羊感染的贾第虫类型均为集聚体E的结论。
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图 2 bg基因位点序列系统进化分析 Figure 2 Phylogenetic analysis based on bg gene sequence of Giardia duodenalis “▲”:本试验所得序列;CD02、ZG16、JY13和XC09分别表示双流、富顺、简阳和经久养殖场阳性样品的编号 |
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图 3 tpi基因位点序列系统进化分析 Figure 3 Phylogenetic analysis based on tpigene sequence of Giardia duodenalis “▲”:本试验所得序列;CD01和BC07分别表示双流和北川养殖场阳性样品的编号 |
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图 4 gdh基因位点序列系统进化分析 Figure 4 Phylogenetic analysis based on gdh gene sequence of Giardia duodenalis “▲”:本试验所得序列;JY13和GY17分别表示简阳和青川养殖场阳性样品的编号 |
本研究中51份贾第虫阳性样品在3个基因位点(bg、tpi和 gdh)分别检测到4、2和2种基因亚型(表2)。在bg位点,50条序列分为4种基因亚型:2个已知的基因亚型E5、E8,2个新的基因亚型E17、E18,共有47条序列是E5亚型,占比94.00%,因此E5是bg位点主要的基因亚型。tpi位点的43条序列中检测到2种基因亚型,分别为E2和E4,都是已知的基因亚型,共有41条序列是E2亚型,占比95.35%,因此E2是tpi位点主要的基因亚型。gdh位点的33条序列鉴定出2种基因亚型,分别是E4和E3,均为已知基因亚型,共有32条序列是E4亚型,占比96.97%,E4是gdh位点主要的基因亚型。
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表 2 在bg、tpi和gdh基因位点对51株贾第虫分离株的基因亚型分析 Table 2 Subtype analyses of 51 Giardia duodenalisisolates based on bg, tpi and gdhgene loci |
本研究采用多位点基因分型法对四川省部分地区成年山羊贾第虫感染情况及感染的贾第虫聚集体类型进行研究。结果显示,试验调查地区成年山羊贾第虫总感染率为14.91%,高于陕西[12]、安徽[18]和黑龙江[17]省部分地区,但低于河南[12]省部分地区,表明我国成年山羊贾第虫感染情况存在明显的地区差异,这种差异可能与不同地区的地理条件和管理因素有关。
近年来,贾第虫基因型分类鉴定常采用的基因包括:小亚单位rRNA(SSU rRNA)基因、tpi、gdh和bg等。对不同的基因位点,检测出的基因型可能不同[22]。此外,以往大多研究[23-25]都是基于某一、两个位点进行测序分析,比多位点序列分型敏感度低且易漏检。多位点基因分型技术检测贾第虫感染具有较好的敏感度,同时可用于贾第虫虫种的鉴定、亚型鉴定以及遗传进化分析,还有助于追溯病原[26]。本研究采用多位点(bg、tpi、gdh)基因分型法对51份阳性样品进行分析,感染的贾第虫均为集聚体E,这与安徽省部分地区报道的贾第虫感染基因型一致[18]。黑龙江省部分地区感染的贾第虫基因型主要为集聚体A、B、E,以集聚体E为主[17],河南和陕西省部分地区感染的基因型为集聚体A、E,以及集聚体A、E的混合感染[12]。四川省部分地区成年山羊感染的贾第虫基因型与我国其他地区存在差异,具体原因需进一步研究。
bg、tpi和gdh这3个基因位点分别以E5、E2和E4基因亚型为主。在bg位点检测到的基因亚型E5与我国上海奶牛分离株(KY769092)[27]、加纳的山羊分离株(KY711415)[9]、韩国的犊牛分离株(KU86884)[28]以及埃塞俄比亚的牦牛和羔羊分离株(KP334150和KT92250)[29]完全一致,该亚型的宿主范围和地域分布比较广泛,可能是反刍动物的常见亚型之一。在tpi位点检测到的主要基因亚型E2,仅在我国的绵羊分离株(KP635100)[26]和西班牙的山羊分离株(EU189326)[13]中有报道,提示该亚型可能只感染羊,具有宿主特异性。在gdh位点检测到的基因亚型E4与我国河南的奶牛分离株(KF843926)序列完全一致[30],目前未在其他宿主中检测到。另外在bg位点还检测到2个新的基因型E17和E18,表明四川地区贾第虫虫种可能具有一定的遗传多样性。
| [1] |
RYAN U, CACCIÒ S M. Zoonotic potential of Giardia
[J]. Int J Parasitol, 2013, 43(12/13): 943-956. ( 0) |
| [2] |
FAYER R. Cryptosporidium: A water-borne zoonotic parasite
[J]. Vet Parasitol, 2004, 126(1/2): 37-56. ( 0) |
| [3] |
XIAO L. Molecular epidemiology of cryptosporidiosis: An update[J]. Exp Parasitol, 2010, 124(1): 80-89. DOI:10.1016/j.exppara.2009.03.018 ( 0) |
| [4] |
ROBERTSON L J, GJERDE B K, HANSEN E F. The zoonotic potential of Giardia and Cryptosporidium in Norwegian sheep: A longitudinal investigation of 6 flocks of lambs
[J]. Vet Parasitol, 2010, 171(1/2): 140-145. ( 0) |
| [5] |
ROBERTSON I D, IRWIN P J, LYMBERY A J, et al. The role of companion animals in the emergence of parasitic zoonoses[J]. Int J Parasitol, 2000, 30(12/13): 1369-1377. ( 0) |
| [6] |
MONIS P T, CACCIO S M, THOMPSON R C A. Variation in Giardia: Towards a taxonomic revision of the genus
[J]. Trends Parasitol, 2009, 25(2): 93-100. DOI:10.1016/j.pt.2008.11.006 ( 0) |
| [7] |
LASEK-NESSELQUIST E, WELCH D M, SOGIN M L. The identification of a new Giardia duodenalis assemblage in marine vertebrates and a preliminary analysis of G. duodenalis population biology in marine systems
[J]. Int J Parasitol, 2010, 40(9): 1063-1074. DOI:10.1016/j.ijpara.2010.02.015 ( 0) |
| [8] |
ABDEL-MOEIN K A, SAEED H. The zoonotic potential of Giardia intestinalis assemblage E in rural settings
[J]. Parasitol Res, 2016, 115(8): 3197-3202. DOI:10.1007/s00436-016-5081-7 ( 0) |
| [9] |
SQUIRE S A, YANG R, ROBERTSON I, et al. Molecular characterization of Cryptosporidium and Giardia in farmers and their ruminant livestock from the Coastal Savannah zone of Ghana
[J]. Int J Parasitol, 2017, 55: 236-243. ( 0) |
| [10] |
TZANIDAKIS N, SOTIRAKI S, CLAEREBOUT E, et al. Occurrence and molecular characterization of Giardia duodenalis and Cryptosporidium spp. in sheep and goats reared under dairy husbandry systems in Greece
[J]. Parasite, 2014, 21(3): 412-418. ( 0) |
| [11] |
DI CRISTANZIANO V, SANTORO M, PARISI F, et al. Genetic characterization of Giardia duodenalis by sequence analysis in humans and animals in Pemba Island, Tanzania
[J]. Parasitol Int, 2014, 63(2): 438-441. DOI:10.1016/j.parint.2013.11.004 ( 0) |
| [12] |
PENG X Q, TIAN G R, REN G J, et al. Infection rate of Giardia duodenalis, Cryptosporidium spp. and Enterocytozoon bieneusi in cashmere, dairy and meat goats in China
[J]. Infect Genet Evol, 2016, 41: 26-31. DOI:10.1016/j.meegid.2016.03.021 ( 0) |
| [13] |
RUIZ A, FORONDA P, GONZÁLEZ J F, et al. Occurrence and genotype characterization of Giardia duodenalis in goat kids from the Canary Islands, Spain
[J]. Vet Parasitol, 2008, 154(1/2): 137-141. ( 0) |
| [14] |
UTAAKER K S, MYHR N, BAJWA R S, et al. Goats in the city: Prevalence of Giardia duodenalis and Cryptosporidium spp. in extensively reared goats in northern India
[J]. Acta Vet Scand, 2017, 59(1): 86. DOI:10.1186/s13028-017-0354-4 ( 0) |
| [15] |
LI J, WANG H, WANG R, et al. Giardia duodenalis infections in humans and other animals in China
[J]. Front Microbiol, 2017, 8: 2004. DOI:10.3389/fmicb.2017.02004 ( 0) |
| [16] |
LIM Y A L, MAHDY M A K, TAN T K, et al. First molecular characterization of Giardia duodenalis from goats in Malaysia
[J]. Mol Cell Probes, 2013, 27(1): 28-31. DOI:10.1016/j.mcp.2012.08.006 ( 0) |
| [17] |
ZHANG W, ZHANG X, WANG R, et al. Genetic characterizations of Giardia duodenalis in sheep and goats in Heilongjiang province, China and possibility of zoonotic transmission
[J]. PloS Negl Trop Dis, 2012, 6(9): e1826. DOI:10.1371/journal.pntd.0001826 ( 0) |
| [18] |
顾有方, 王立克, 李阳, 等. 安徽省部分地区山羊蓝氏贾第鞭毛虫流行病学调查及基因型分析[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2014, 32(5): 401-403. ( 0) |
| [19] |
ZHONG Z, TIAN Y, LI W, et al. Multilocus genotyping of Giardia duodenalis in captive non-human primates in Sichuan and Guizhou provinces, Southwestern China
[J]. PloS One, 2017, 12(9): e0184913. DOI:10.1371/journal.pone.0184913 ( 0) |
| [20] |
APPELBEE A J, FREDERICK L M, HEITMAN T L, et al. Prevalence and genotyping of Giardia duodenalis from beef calves in Alberta, Canada
[J]. Vet Parasitol, 2003, 112(4): 289-294. DOI:10.1016/S0304-4017(02)00422-3 ( 0) |
| [21] |
CACCIÒ S M, BECK R, LALLE M, et al. Multilocus genotyping of Giardia duodenalis reveals striking differences between assemblages A and B
[J]. Int J Parasitol, 2008, 38(13): 1523-1531. DOI:10.1016/j.ijpara.2008.04.008 ( 0) |
| [22] |
FENG Y, ORTEGA Y, CAMA V, et al. High intragenotypic diversity of Giardia duodenalis in dairy cattle on three farms
[J]. Parasitol Res, 2008, 103(1): 87-92. DOI:10.1007/s00436-008-0932-5 ( 0) |
| [23] |
SANTÍN M, TROUT J M, FAYER R. Prevalence and molecular characterization of Cryptosporidium and Giardia species and genotypes in sheep in Maryland
[J]. Vet Parasitol, 2007, 146(1/2): 17-24. ( 0) |
| [24] |
GEURDEN T, THOMAS P, CASAERT S, et al. Prevalence and molecular characterisation of Cryptosporidium and Giardia in lambs and goat kids in Belgium
[J]. Vet Parasitol, 2008, 155(1/2): 142-145. ( 0) |
| [25] |
YANG R, JACOBSON C, GORDON C, et al. Prevalence and molecular characterisation of Cryptosporidium and Giardia species in pre-weaned sheep in Australia
[J]. Vet Parasitol, 2009, 161(1/2): 19-24. ( 0) |
| [26] |
WANG H, QI M, ZHANG K, et al. Prevalence and genotyping of Giardia duodenalis isolated from sheep in Henan Province, central China
[J]. Infect Genet Evol, 2016, 39: 330-335. DOI:10.1016/j.meegid.2016.02.006 ( 0) |
| [27] |
WANG X, CAI M, JIANG W, et al. High genetic diversity of Giardia duodenalis assemblage E in pre-weaned dairy calves in Shanghai, China, revealed by multilocus genotyping
[J]. Parasitol Res, 2017, 116(8): 2101-2110. DOI:10.1007/s00436-017-5509-8 ( 0) |
| [28] |
LEE S H, VANBIK D, KIM H Y, et al. Prevalence and molecular characterisation of Giardia duodenalis in calves with diarrhoea
[J]. Vet Rec, 2016, 178(25): 633. DOI:10.1136/vr.103534 ( 0) |
| [29] |
WEGAYEHU T, KARIM M R, LI J, et al. Prevalence and genetic characterization of Cryptosporidium species and Giardia duodenalis in lambs in Oromia Special Zone, Central Ethiopia
[J]. BMC Vet Res, 2016, 13(1): 22. DOI:10.1186/s12917-016-0916-0 ( 0) |
| [30] |
WANG H, ZHAO G, CHEN G, et al. Multilocus genotyping of Giardia duodenalis in dairy cattle in Henan, China
[J]. PloS One, 2014, 9(6): e100453. DOI:10.1371/journal.pone.0100453 ( 0) |
2018, Vol. 39



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